间歇低氧运动对肥胖大鼠食欲的影响及其机制分析

对照组(10只)和肥胖造模组(60只)。大鼠以5只一笼饲养于塑料笼内，塑料笼口用不锈钢网盖好。网上放置饲料和水(每天更换)，大鼠自由摄食。笼内底部铺垫干燥垫料，并定时更换。动物房内自然昼夜节律变化光照，利用排气扇保持通风，空调定温((23±2) ℃)，相对湿度(RH)40%~60%。

1.2肥胖大鼠造模与分组

正常对照组喂养普通饲料，造模组大鼠喂养高脂饲料，模型饲料配方每100 g饲料中：奶粉10 g、猪油10 g、全蛋粉13 g、白糖7 g、普通饲料6O g以及浓缩鱼肝油10滴[1]。所有饲料混匀后加适量水压成条状，烘干即成。饲养6周后根据大鼠体重来判断造模情况。造模组体重超过用普通饲料喂养大鼠的平均体重10%的大鼠作为肥胖模型组大鼠[2-3]，并于造模成功的SD大鼠中挑选40只，随机分为常氧安静组、间歇低氧安静组、常氧运动组和间歇低氧运动组，每组10只。

1.3干预方式

对造模成功的肥胖SD大鼠进行4周间歇低氧运动干预。间歇低氧安静组和间歇低氧运动组每天进行4 h的低氧(氧体积分数为15.4％)刺激；实验过程中常氧运动组的运动强度与间歇低氧运动组的低氧与运动的复合强度(低氧+运动)相一致，其运动强度的设定均根据实验中常氧运动组大鼠25 m/min跑速与间歇低氧运动组大鼠20 m/min的跑速时的血乳酸均为4 mmol/L。常氧运动组进行25 m/min、5 d/周、1 h/d的跑台运动，间歇低氧运动组进行20 m/min、5 d/周、1 h/d的跑台运动。实验中采用美国Hypoxico公司生产的低氧分压系统(HTS)，造成人工的常压低氧环境；动物跑台为购于杭州立泰科技有限公司的BCPT-98型电动动物跑台。

1.4样品采集与测试方法

试验期间，每天定时称量大鼠体重和计算24 h内饲料消耗量。在末次干预24 h后，进行禁食过夜、取样。腹腔注射体积分数为10%水合三氯乙醛溶液(剂量为0.3 mg/g)麻醉，用血清管进行腹主动脉取血，然后进行3 000 r/min离心20 min，取血清于-20℃低温保存，待测有关指标。

取完样后，断头并剪开颅骨取出整个大脑，在冰浴上小心剥离出下丘脑组织并称重，然后放入玻璃匀浆管中，加入2 mL的质量分数为0.86％的生理盐水于冰浴中充分匀浆，随后离心20 min(3 000 r/min)，取上清液待测。

血清瘦素、神经肽Y和下丘脑瘦素、瘦素受体等指标采用酶联免疫法测定，试剂盒分别由ADL和BPB公司生产。蛋白定量测定所用的考马斯亮兰试剂由西安沃尔森公司生产，标准蛋白由南京建成生物研究所生产。测试方法严格按照试剂盒说明书进行。

1.5数据统计

运用肖维勒准则对原始数据进行异常数值筛选。采用SPSS11.0统计软件进行one-way ANOVA检验，实验数据以平均值±标准差( ±s)表示。

2实验结果及分析

2.1间歇低氧运动前后各组大鼠的体重

从表1可以看出，在间歇低氧运动前常氧安静组、间歇低氧安静组、常氧运动组和间歇低氧运动组4组SD大鼠的体重差异无显著性，但与正常对照组SD大鼠相比均显著升高。表明营养性肥胖大鼠模型建立，运动前各组大鼠的初始条件一致。

经过4周间歇低氧运动后，与常氧安静组相比，间歇低氧运动组大鼠的体重显著性下降(P<0.01)，已降至正常对照组水平。而间歇低氧安静组和常氧运动组大鼠的体重虽有下降趋势，但无统计学意义。

2.2间歇低氧运动期间各组大鼠体重的变化

图1显示，低氧安静组、常氧运动组和间歇低氧运动组3组大鼠的体重在4周间歇低氧运动期间均比常氧安静组低，表明低氧、运动都可减缓SD大鼠的体重增加，其中，以间歇低氧和运动相结合的方式效果最好。

2.3间歇低氧运动期间各组大鼠摄食情况

图2表明，在4周的间歇低氧运动期间，与常氧安静组相比，间歇低氧安静组、常氧运动组和间歇低氧运动组3组大鼠的平均日摄食量均下降。

2.4四周间歇低氧运动对大鼠摄食相关因子的影响

从表2可以看出，与常氧安静组相比，间歇低氧安静组、常氧运动组和间歇低氧运动组3组大鼠下丘脑的瘦素(Leptin)和瘦素受体(Leptin-R)均有升高的趋势，其中，常氧运动组和间歇低氧运动组具有统计学显著性意义(常氧运动组P<0.05，间歇低氧运动组P<0.01)；与间歇低氧安静组和常氧运动组相比，间歇低氧运动组大鼠下丘脑的瘦素和瘦素受体也显著性升高(与间歇低氧运动组比较P<0.01，与常氧运动组比较P<0.05)。然而，试验中各组大鼠血清神经肽Y(NPY)变化不大。

3讨论

从基本能量代谢的生物物理学角度来看，肥胖是能量过剩造成的。减少能量的摄入，对一部分肥胖者可以达到减重的目的。中枢神经系统是能量平衡的重要调节者，下丘脑是控制采食量、能量消耗和体重的CNS区的关键部位之一，存在着复杂的“食欲调节网络”(appetite regulation network，ARN)。下丘脑的“食欲调节网络”通过各种食欲调节因子(包括食欲促进因子和食欲抑制因子)的信号传递作用，对哺乳动物的食欲进行综合调节。

瘦素通过与瘦素受体的结合而影响着机体许多生理系统和代谢通路，在控制体脂、能量平衡等方面发挥作用[4]。多数资料显示，瘦素参与摄食行为及体内能量代谢调节的主要途径是瘦素与中枢神经系统瘦素受体结合后通过抑制下丘脑弓状核神经肽Y(Neuropeptide Y，NPY)神经元合成与释放NPY，进而参与摄食行为和能量代谢的调控[5]。

NPY是下丘脑“食欲调节网络”中重要的食欲促进因子。NPY通过与受体Y1和Y5相互作用，发挥促进食欲的作用。NPY对其他多种食欲促进因子和抑制因子具有调节作用。同时，NPY对食欲的促进作用也受其他食欲调节因子的影响。食欲抑制因子瘦素对其就有一定的抑制作用。在许多肥胖啮齿类动物和禁食鼠模型中，下丘脑NPY的表达上升，通过瘦素处理可以直接抑制NPY从动物下丘脑释放。

本实验结果显示，模型组大鼠血清瘦素水平较正常组明显升高，而下丘脑中瘦素水平明显低于正常组，提示肥胖大鼠存在着高瘦素血症。肥胖大鼠经过4周间歇低氧运动刺激后，大鼠血清瘦素水平明显降低，与Zaccaria[6]的研究结果一致。然而，大鼠下丘脑瘦素和瘦素受体水平明显升高，而大鼠摄食减少。提示，间歇低氧运动对下丘脑的“食欲调节网络”产生影响，进而抑制大鼠的食欲。间歇低氧运动可能是通过提高下丘脑中瘦素和瘦素受体的水平，使下丘脑NPY的水平降低，进而抑制大鼠的食欲，使大鼠的摄食量减少。

下丘脑瘦素水平升高的原因可能是间歇低氧运动通过使血中游离的瘦素量增加和(或)提高瘦素的血脑屏障通过率。而下丘脑瘦素受体水平升高的原因除间歇低氧运动可能通过提高瘦素受体的血脑屏障通过率这一途径外，还可能通过间歇低氧刺激促进下丘脑瘦素受体基因表达这一途径来实现。下丘脑瘦素和瘦素受体浓度升高可以通过抑制下丘脑弓状核NPY神经元合成与释放NPY，进而参与摄食行为和能量代谢的调控[5]。瘦素可能通过2条途径来抑制NPY的促摄食作用：1)直接作用。瘦素可能抑制下丘脑NPY mRNA的转录并促进NPY的分解，从而降低NPY的合成(Ahima，1996)；瘦素还可通过抑制NPY神经元上的cAMP-蛋白激酶A来减少细胞内的Ca2+浓度，从而直接抑制NPY神经元的活性(Zhao等，2002)。2)间接作用。瘦素能激活其它神经元，产生一些神经递质，来抑制NPY的作用。如瘦素能增加α-促黑素细胞激素(α-MSH)和MCR-4受体的表达，并增加它们对NPY的抑制作用(Kask，2000)。此外，瘦素可通过激活产生CART、CRH等来抑制NPY的合成(Miyoung，1998；Matteri1，2001)。

然而，本研究中各组试验大鼠血清NPY浓度变化不大，与下丘脑瘦素和瘦素受体没有相关性，这可能是由于下丘脑中的NPY与血清中的NPY来自于不同的组织，各自有着不同的调控系统，完成各自的特定生理功能[6]，并且血清中的NPY可能不能通过血脑屏障。

当然，间歇低氧运动还可能通过其它的途径来抑制食欲。如：1)低氧降低食欲肽在下丘脑的表达，进而抑制食欲；2)低氧促进促肾上腺皮质激素分泌，进而抑制食欲；3)运动导致下丘脑中胰岛素的增加，抑制下丘脑的神经肽Y(NPY)的mRNA的表达，减少其含量，抑制其活性，减少摄食量[7]。

另外，试验中发现，间歇低氧安静组大鼠与常氧安静组大鼠的摄食量差值存在一定的波动，即在第1周和第3周两者的差值较大，而在第2周和第4周两者的差距缩小。提示，大鼠对间歇低氧刺激可能存在一定的适应性，随着大鼠对间歇低氧刺激的不断适应，间歇低氧对大鼠摄食的抑制将逐渐减弱。

参考文献：

[1] 朱惠莲，许月初，蒋卓勤，等. 丙酮酸对肥胖大鼠体重和脂肪代谢的影响[J]. 营养学报，2002，24(3)：229-232.

[2] Stephen C Woods，Randy J Seeley，Paul A Rushing，et al. A controlled high fat diet induces an obese syndrome in rats[J]. J Nutr，2003，133(4)：1081-1087.

[3] 陈佳红，崔建美，杨永清，等. 针刺和饮食结构调整对实验性肥胖大鼠减肥作用的效应研究[J]. 上海针灸杂志，2006，25(4)：32-34.

[4] Miczke A，Pupek M D. Leptin and obesity[J]. Pol Merkuriusz Lek，2000，8(44)：109-112.

[5] Stphens T W，Basinski M，Bristow P K，et al. The role of neuropeptide Y in the antiobesity action of the obese gene product [J]. Nature，1995，377：530-532.

[6] Zaccaria M，Ermolao A，Bonvicini P，et al. Decrease serum leptin levels during prolonged high altitude exposure[J]. J Appl Physiol，2004，92(3)：249-253.

[7] 张缨，冯美云，吴昊，等. 有氧运动训练对大鼠下丘脑食欲调节肽的影响[J]. 中国运动医学杂志，2002，21(1)：19-22.

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